Um die Herausforderung der zahlreichen Lipidmoleküle und der schwer erkennbaren Struktur in Ölpflanzen zu bewältigen, wurde eine Analyse der Lipide in fünf Ölpflanzenarten (Raps, Sojabohne, Erdnuss, Sonnenblumenkerne, Mais) mittels Ultrahochleistungsflüssigkeitschromatographie gekoppelt mit hochauflösender Massenspektrometrie durchgeführt. Die Lipide wurden auf einer umgekehrten Phasensäule ACQUITY UPLC BEH C18 (2,1 mm × 100 mm, 1,7 μm) getrennt. Datenabhängige MS2-Daten wurden im positiven und negativen Ionenmodus mit einem UPLC-Orbitrap Fusion Mass-Spektrometer erfasst. Die qualitative Analyse der Lipidmoleküle erfolgte anhand von sekundären Massenspektrumsfragmenten, präziser Molekülmasse, Retentionszeit und Datenbankabgleich, wodurch eindeutige Strukturen der Lipidmoleküle gewonnen wurden. Insgesamt wurden 132 Lipidmoleküle in den Ölpflanzen identifiziert, darunter 8 Diacylglycerine (DG), 5 Lyso-Phosphatidylcholine (LPC), 2 Lyso-Phosphatidylethanolamine (LPE), 24 Phosphatidylcholinen (PC), 18 Phosphatidylethanolamine (PE), 8 Phosphatidylinositole (PI), 1 Phosphatidylglycerol (PG), 1 Phosphatidylserin (PS) sowie 65 Triacylglycerine (TG). Der relative Gehalt wurde anhand der Peakflächen verglichen. Diese Methode ermöglicht eine gute Trennung der Lipidkomponenten und hebt die Analyse der Lipidbestandteile in Ölpflanzen vom Fettsäureanalyse-Niveau auf die Lipidmolekülebene an, liefert eine Forschungsgrundlage für die bessere Nutzung der Lipidbestandteile in Ölpflanzen und fördert die Entwicklung der Lipidomik.

Ölpflanzen;Lipide;Ultrahochleistungsflüssigkeitschromatographie - hochauflösende Massenspektrometrie